Original
Prevalencia de Giardia
duodenalis en caninos domésticos de Quisapincha, Ecuador
Prevalence of
Giardia duodenalis
in domestic dogs of Quisapincha, Ecuador
Jaine Labrada Ching *
, Fredy Córdova *![]()
* Universidad Técnica de Ambato,
Ecuador.
Correspondencia: jalachi17@gmail.com
Recibido: Marzo, 2026; Aceptado: Abril, 2026; Publicado:
Mayo, 2026.
Objetivo. Determinar la prevalencia de Giardia
duodenalis en perros domiciliados de la parroquia
Quisapincha y la asociación con la edad, sexo y
control parasitario previo. Materiales y
métodos: Se recolectaron 122 muestras fecales de perros seleccionados desde
el registro parroquial. El diagnóstico se efectuó mediante flotación de Faust con el uso de sulfato de zinc al 33 % y la intensidad
se estimó como quistes por gramo (QPG) con cámara de McMaster.
Se estimó la prevalencia de Giardia duodenalis con un intervalo de confianza del 95 % y se
aplicó la prueba de chi cuadrado (p < 0,05) para la evaluación de la
asociación entre variables. Resultados:
La prevalencia fue 3,28 % (4/122). Todos los positivos evidenciaron la eliminación de
quistes (150–450 QPG; promedio
250). El 50 % de los casos ocurrió en perros geriátricos, mayores de 7 años, el
75 % en hembras y el 75 % en animales sin desparasitación interna en los 6
meses previos; no se encontraron asociaciones estadísticamente significativas
(p > 0,05) entre la prevalencia y las variables edad
(χ² = 0,73; 2 grados de libertad [GL]), sexo
(χ² = 1,87; 1 GL) ni control parasitario
(χ² = 0,62; 1 GL). Conclusiones:
Giardia duodenalis
se presentó con baja prevalencia en la población estudiada. Asimismo, se
observó una mayor frecuencia de infección en perros mayores de 7 años, en
hembras y aquellos sin desparasitación reciente; sin embargo, estas
asociaciones no mostraron significancia estadística (p > 0,05).
Palabras clave: enfermedades parasitarias, Giardia
duodenalis, perros, prevalencia, zoonosis (Fuente:
AIMS)
Objective. To determine the prevalence
of Giardia duodenalis in
domestic dogs in the Quisapincha parish and its association with age, sex, and prior parasite control. Materials
and methods: 122 fecal samples
were collected from dogs selected
from the parish registry. Diagnosis was performed using
Faust flotation with 33% zinc sulfate, and the intensity was estimated
as cysts per gram (CPG) using a McMaster chamber. The prevalence
of Giardia duodenalis was estimated with
a 95% confidence interval,
and the chi-square test (p
< 0.05) was applied to evaluate the association
between variables. Results:
The prevalence was 3.28% (4/122). All positive samples showed cyst shedding (150–450 CPG; mean
250). Fifty percent of
cases occurred in geriatric
dogs (over 7 years old), 75% in females, and 75% in animals that had not
received internal deworming in the previous 6 months. No statistically significant associations (p > 0.05) were found between prevalence
and the variables age
(χ² = 0.73; 2 degrees of freedom
[DF]), sex (χ² = 1.87; 1 DF), or parasite
control (χ² = 0.62; 1 DF). Conclusions:
Giardia duodenalis was present with
low prevalence in the studied population.
A higher frequency of infection was observed
in dogs over 7 years old, in females,
and in those without recent deworming; however, these associations did not show statistical significance (p > 0.05).
Keywords: dogs, Giardia duodenalis, parasitic
diseases, prevalence, zoonosis (Source: AIMS)
INTRODUCCIÓN
La giardiosis
canina, causada por Giardia duodenalis, constituye una parasitosis intestinal de
relevancia en la salud animal y la salud pública debido a su potencial
zoonótico. Estudios recientes indican que la infección presenta una
distribución global, con prevalencias variables según la región geográfica, la
edad y las condiciones de manejo de los animales, pudiendo cursar de forma
subclínica o asociarse a cuadros de diarrea aguda o crónica, principalmente en
animales jóvenes, lo que facilita la diseminación de quistes en el ambiente
(Smith y Starkey, 2023; Kurnosova et al.,
2024). En Ecuador, la información epidemiológica disponible sobre G. duodenalis en perros es limitada y se encuentra
concentrada en poblaciones específicas, lo que dificulta la estimación de su
magnitud real y su distribución local y regional (Trueba et al., 2016).
Diversos factores han sido asociados
a la infección por G. duodenalis en perros,
entre ellos la edad, el tipo de manejo, la densidad poblacional y las
condiciones higiénico-sanitarias del entorno. Se ha descrito una mayor
susceptibilidad en animales jóvenes, atribuida a la inmadurez inmunológica,
mientras que los perros mantenidos en condiciones de hacinamiento o con acceso
a ambientes contaminados presentan mayores tasas de infección (Chiebao et al., 2020; Smith y Starkey, 2023).
Prácticas inadecuadas de desparasitación favorecen la persistencia y
reinfección, aunque el sexo no ha mostrado un efecto consistente como factor de
riesgo (Adell-Aledón et al., 2018; Kurnosova et al., 2024). La identificación del
parásito se ve dificultada por la eliminación intermitente de quistes y la
frecuente ausencia de signos clínicos, lo que resalta la importancia del uso de
técnicas coproparasitológicas sensibles, como la flotación centrífuga con
sulfato de zinc, en estudios epidemiológicos (Faust et
al., 1938; Smith y Starkey, 2023), aun cuando la cuantificación de quistes
se utilice principalmente con fines descriptivos y comparativos (Boucard et al., 2021).
La presencia de G. duodenalis en poblaciones caninas cobra importancia
adicional en sistemas de producción animal y en entornos rurales, donde la
interacción estrecha entre animales domésticos, humanos y el ambiente puede
facilitar la transmisión del parásito. En contextos con alta densidad animal,
se han reportado prevalencias elevadas y la detección de ensamblajes zoonóticos
(A y B), lo que incrementa el riesgo de transmisión interespecífica (Agresti et al., 2022), aunque en perros predominan
los ensamblajes adaptados al hospedador (C y D) (Cai et
al., 2021; Barbosa et al., 2023). En este contexto, el presente
estudio tuvo como objetivo determinar la prevalencia de Giardia
duodenalis en perros domiciliados de la parroquia
Quisapincha y la asociación con la edad, sexo y
control parasitario previo.
MATERIALES
Y MÉTODOS
Localización
del área de estudio
El trabajo de investigación se
realizó en el centro de la parroquia Quisapincha,
cantón Ambato, provincia de Tungurahua. Esta parroquia se ubica al suroccidente
de la ciudad de Ambato, aproximadamente a 12 km del casco urbano, y limita al
norte con la provincia de Cotopaxi, al este con la parroquia San Bartolomé de
Pinllo, al sur con la parroquia Santa Rosa y al oeste con San Fernando de Pasa.
Estos datos corresponden a la descripción geográfica oficial disponible en
fuentes públicas actualizadas.
Las características geográficas de la
parroquia Quisapincha incluyen coordenadas
aproximadas de 1°14'04" S y 78°41'04" O, ubicándola en la ecorregión
andina central del Ecuador.
Según registros geodésicos de libre acceso, Quisapincha
presenta valores de altitud que oscilan alrededor de 2,481 a 4,179 m s. n. m.,
dentro de un rango topográfico más amplio de la zona
(Topographic‑Map.com, 2026) El clima del área de estudio correspondió a
un clima templado‑frío, con una temperatura media aproximada de
12 °C.
Población y
tamaño de muestra
La población del estudio estuvo
conformada por 178 caninos domiciliados, registrados en la última campaña de
vacunación antirrábica y desparasitación realizada por el Ministerio de Salud
Pública en 2024 y publicada por el Gobierno Autónomo Descentralizado (GAD)
Parroquial de Quisapincha. Con base en este universo
poblacional, el tamaño de muestra se calculó aplicando la fórmula para
poblaciones finitas propuesta por Thrusfield et al. (2018), utilizando un total de N = 178
caninos registrados. Para el cálculo se consideró un nivel de confianza del 95
% correspondiente a Z = 1,96, una proporción esperada y no esperada de la
característica de estudio (p = q = 0,5) y un nivel de precisión del 5 % (d =
0,05). Tras sustituir estos valores en la ecuación, se obtuvo un tamaño
muestral final de 122 caninos, el cual fue utilizado para el desarrollo del
estudio.
![]()
Del total de la muestra calculada (n
= 122), se incluyeron en el estudio todos los perros seleccionados cuyos
propietarios aceptaron la participación y la toma de muestras fecales. No se
establecieron criterios de exclusión específicos, por lo que el muestreo
incluyó caninos independientemente de su estado clínico o de antecedentes
recientes de manejo sanitario, con el fin de estimar la prevalencia real de Giardia duodenalis.
en la población canina domiciliada en la parroquia Quisapincha.
Recolección,
etiquetado y transporte de muestras
Las muestras consistieron en heces
frescas recolectadas tras la defecación espontánea de cada canino, siguiendo
medidas de bioseguridad. Cada muestra fue colocada en un contenedor estéril
rotulado con los datos del animal (edad, sexo y raza). Las muestras se
transportaron inmediatamente a temperatura inferior a 10 °C dentro de una
hielera para preservar su integridad hasta su llegada al laboratorio de
Microbiología de la Universidad Técnica de Ambato, donde fueron procesadas para
el análisis correspondiente.
Materiales de
campo y de laboratorio
Los materiales empleados en la
investigación incluyeron insumos de campo y de laboratorio necesarios para la
recolección, preservación y análisis de las muestras fecales. Para el trabajo
en campo se utilizaron guantes desechables, mascarilla, cofia, desinfectante
para manos, cajas recolectoras de heces, termómetro ambiental, hielera para el
transporte refrigerado de las muestras y vestimenta de protección personal para
la recolección directa. En el laboratorio se emplearon un microscopio óptico
compuesto, cámara McMaster, portaobjetos y
cubreobjetos, varilla de vidrio, mortero y pistilo, pipetas, probetas,
gradillas, colador, tubos de tapa roja, hisopos, piseta, bolsas para desechos
biológicos, balanza analítica, vasos de precipitación, agua destilada, alcohol
y una centrífuga de mesa para el procesamiento del material biológico.
Adicionalmente, se utilizó solución de Lugol para la tinción y una solución de sulfato
de zinc al 33,3 % como medio de flotación, mientras que el material biológico
consistió exclusivamente en muestras frescas de heces caninas recolectadas tras
la defecación espontánea de los animales.
Para la recolección de las muestras
en el área de estudio se emplearon materiales de bioseguridad y herramientas
destinadas a garantizar la integridad de las muestras y la seguridad del
personal.
Técnica de
flotación centrífuga (Faust)
La detección de Giardia
duodenalis se realizó mediante la técnica de
flotación centrífuga con sulfato de zinc, considerada el método estándar para
el diagnóstico coproparasitológico debido a su elevada sensibilidad para la
recuperación de quistes (Souza‑Dantas et al., 2007) El
procedimiento consistió en homogenizar de 3 a 5 g de heces en 10–20 mL de agua destilada, filtrar la suspensión, transferirla a
un tubo y centrifugarla para separar el sedimento. Posteriormente, el sedimento
se resuspendió en solución de sulfato de zinc con una
gravedad específica de 1.18, llenando el tubo hasta formar un menisco sobre el
cual se colocó un cubreobjetos durante 5–10 minutos, para luego realizar la
lectura microscópica sobre una gota de Lugol (Faust et
al., 1938). Esta técnica fue confirmada como una herramienta diagnóstica
altamente sensible y de amplio uso en medicina veterinaria para la detección de
Giardia duodenalis
en caninos. (Leutenegger et al., 2023)
Cuantificación
de quistes (McMaster)
El cálculo de quistes por gramo (QPG)
se realizó según el método de McMaster que permite
determinar la carga parasitaria a partir del número de estructuras observadas
en ambas cámaras de la lámina. Para ello, se cuantificaron los quistes
presentes en las dos cámaras de lectura y se aplicó la fórmula QPG = (Q1 +Q2) ×
50, lo que permitió estimar la intensidad de infección. Este método se basa en
el uso de cámaras calibradas que contienen un volumen conocido de suspensión
fecal, permitiendo convertir el conteo crudo en un valor equivalente por gramo
de heces. La técnica es ampliamente utilizada en parasitología veterinaria para
la cuantificación de ooquistes, quistes y huevos gracias a su rapidez,
reproducibilidad y eficiencia diagnóstica. (Western College
of Veterinary Medicine, 2021) El cálculo de quistes
por gramo (QPG) se realizó mediante el método de McMaster
como una medida cuantitativa descriptiva de la eliminación de quistes. No
obstante, en el caso de Giardia duodenalis en perros, no existen umbrales cuantitativos
validados que permitan clasificar la intensidad de la infección en categorías
de leve, moderada o severa, debido a la eliminación intermitente de quistes y a
la falta de correlación directa entre el número de quistes observados y la
severidad clínica (Lappin, 2011; Robertson, 2023).
Por tal motivo, los valores de QPG obtenidos fueron utilizados únicamente con
fines comparativos y descriptivos. La presencia de Giardia
duodenalis se determinó mediante examen
coprológico.
El estudio se estructuró
bajo un diseño observacional, transversal y analítico, orientado a estimar la
prevalencia de Giardia duodenales en
caninos domiciliados y a evaluar su asociación con variables biológicas (edad,
sexo) y de manejo (control antiparasitario). La unidad experimental
correspondió a cada canino muestreado. Se registró una única medición
parasitológica y los valores correspondientes de las variables investigadas.
Las categorías experimentales fueron: la edad de los animales agrupados en
cachorros (<1 año), jóvenes/adultos (1–7 años) y geriátricos (>7 años).
El sexo macho/hembra y el control antiparasitario en desparasitado/no
desparasitado en los últimos 6 meses.
El procesamiento de los
datos obtenidos se realizó mediante la organización y tabulación de la
información en una hoja de cálculo de Microsoft Excel, donde se elaboraron
tablas de frecuencia, porcentajes y estimaciones de prevalencia de Giardia duodenalis con sus
respectivos intervalos de confianza al 95 % (IC 95 %). El intervalo
de confianza para la prevalencia se calculó utilizando el método exacto
binomial de Clopper–Pearson, recomendado para
estudios transversales con bajo número de eventos (Clopper
y Pearson, 1934; Thrusfield et al., 2018).
Posteriormente, los datos
fueron exportados al software InfoStat para el
análisis estadístico inferencial. Para evaluar la asociación entre la presencia
de Giardia duodenalis
y las variables estudiadas se aplicó la prueba de Chi cuadrado de Pearson
(χ²). Dado el reducido número de casos positivos observados, los análisis
se abordaron con un enfoque exploratorio y los resultados se interpretaron de
forma descriptiva, sin aplicar la corrección de continuidad de Yates. El nivel
de significancia estadística se estableció en p < 0,05 para la
interpretación de los resultados.
Consideraciones
éticas
El estudio se llevó a
cabo respetando los principios éticos fundamentales para la investigación en
animales, garantizando el bienestar de los perros incluidos y la minimización
de cualquier posible riesgo asociado al procedimiento diagnóstico. La
recolección de muestras fecales se realizó de manera no invasiva, sin causar
dolor, estrés ni alteraciones fisiológicas a los animales, lo cual es
considerado éticamente aceptable en estudios epidemiológicos observacionales en
medicina veterinaria (Bertout et al., 2021).
De acuerdo con los
principios de las 3R (Reemplazo, Reducción y Refinamiento), el número de
animales incluidos fue el mínimo necesario para responder a los objetivos del
estudio, evitando procedimientos innecesarios y optimizando el uso de la
información obtenida (Díaz et al., 2021). Asimismo, el estudio se ajustó
a las recomendaciones internacionales para investigaciones con animales de
compañía, que establecen la obligatoriedad del consentimiento informado de los
propietarios y la confidencialidad de los datos obtenidos (World Small Animal Veterinary
Association, 2023).
Finalmente, el desarrollo
del estudio se alineó con las directrices éticas propuestas para
investigaciones clínicas y epidemiológicas en animales de propiedad privada,
priorizando el respeto por la vida animal, la transparencia científica y la
integridad de los resultados (Bertout et al.,
2021; ESCCAP, 2024).
RESULTADOS
Del total de 122 caninos evaluados en
la zona centro de la parroquia de Quisapincha, la
prevalencia global de Giardia duodenalis fue del 3,28 % (IC 95 %:
0,90–8,18), lo que evidencia una baja proporción de animales infectados en la
población estudiada (Tabla 1). Este resultado sugiere que, en comunidades
rurales donde existen intervenciones sanitarias como campañas periódicas de
vacunación y desparasitación, la prevalencia de Giardia
duodenalis puede mantenerse en valores reducidos,
aun cuando persisten condiciones ambientales y de convivencia humano–animal que
podrían favorecer la transmisión del parásito.
Tabla 1. Prevalencia
de Giardia duodenalis
(global y por categorías) con IC 95 % y prueba χ² de Pearson.
|
Variable |
Categoría |
Positivo/Total |
Prevalencia (%) |
IC 95 % |
χ² |
gl |
p |
|
Global |
Total |
4 / 122 |
3,28 |
0,90 – 8,18 |
— |
— |
— |
|
Edad |
Cachorros (<1 año) |
1 / 23 |
4,35 |
0,11 – 21,95 |
0,73 |
2 |
0,69 |
|
Jóvenes / adultos (1–7 años) |
1 / 56 |
1,79 |
0,05 – 9,55 |
||||
|
Geriátricos (>7 años) |
2 / 43 |
4,65 |
0,57 – 15,81 |
||||
|
Sexo |
Hembra |
3 / 51 |
5,88 |
1,23 – 16,24 |
1,87 |
1 |
0,17 |
|
Macho |
1 / 71 |
1,41 |
0,04 – 7,60 |
||||
|
Control antiparasitario |
Desparasitado (≤6 meses) |
1 / 54 |
1,85 |
0,05 – 9,89 |
0,62 |
1 |
0,43 |
|
No desparasitado (>6 meses) |
3 / 68 |
4,41 |
0,92 – 12,36 |
El intervalo de confianza al 95 % se calculó mediante el método
exacto binomial (Clopper–Pearson).
χ²: prueba de Chi cuadrado de Pearson; gl: grados de libertad. Se
consideró significativo p < 0,05.
El análisis de la prevalencia según
los grupos etarios mostró que los perros geriátricos (>7 años) presentaron
la prevalencia más elevada (4,65 %), seguidos por los cachorros (<1
año) con un 4,35 %, mientras que los animales jóvenes y adultos (1–7
años) registraron el valor más bajo (1,79 %) (Tabla 1). Aunque esta
distribución podría sugerir una mayor susceptibilidad en animales de edad
avanzada, posiblemente relacionada con cambios inmunológicos asociados al
envejecimiento y a una exposición ambiental sostenida (Thompson y Ash, 2016),
el análisis estadístico mediante la prueba de Chi cuadrado no evidenció una
asociación significativa entre la edad y la prevalencia de Giardia
duodenalis (χ² = 0,73; gl = 2; p = 0,69). En
este sentido, las variaciones observadas responderían al comportamiento propio
del muestreo y no a un patrón epidemiológico definido en la población evaluada.
En relación con el sexo, se observó
una mayor prevalencia en hembras (5,88 %) en comparación con los machos
(1,41 %) (Tabla 1). Si bien esta diferencia podría sugerir una mayor
exposición o susceptibilidad en hembras, especialmente en contextos donde
influyen factores fisiológicos o reproductivos, los antecedentes indican que
las diferencias por sexo en la infección por Giardia
son variables e inconsistentes. En concordancia con ello, la prueba de Chi
cuadrado no mostró una asociación estadísticamente significativa entre el sexo
y la prevalencia de Giardia duodenalis (χ² = 1,87; gl = 1; p = 0,17),
indicando que esta variable no influyó de forma significativa en la
probabilidad de infección dentro de la población estudiada.
Respecto al control antiparasitario
previo, la prevalencia fue mayor en los caninos que no habían sido
desparasitados en los últimos seis meses (4,41 %) en comparación con
aquellos que contaban con desparasitación reciente (1,85 %) (Tabla 1).
Esta diferencia sugiere que la ausencia de un control antiparasitario regular
podría favorecer la persistencia de Giardia
duodenalis en la población canina. No obstante,
la prueba de Chi cuadrado no evidenció una asociación estadísticamente
significativa entre el control antiparasitario y la prevalencia del parásito
(χ² = 0,62; gl = 1; p = 0,43), lo que indica que, en el contexto de este
estudio, el antecedente de desparasitación no fue un factor determinante para
la infección. Esta situación podría explicarse por el uso de antiparasitarios
de amplio espectro orientados principalmente al control de helmintos, los
cuales no siempre resultan eficaces frente a protozoarios como Giardia duodenalis.
En la Tabla 2 se observa que todos
los casos positivos identificados en el estudio evidenciaron la eliminación de
quistes de Giardia duodenalis,
con valores descriptivos de quistes por gramo de heces (QPG) comprendidos entre
150 y 450. Estos valores fueron empleados exclusivamente como una medida
cuantitativa descriptiva de la excreción parasitaria y no como un criterio de
clasificación de la intensidad de la infección, dado que no existen umbrales
cuantitativos validados para Giardia duodenalis en perros.
Tabla 2. Conteo de quistes de Giardia duodenalis
mediante la cámara de McMaster y estimación
descriptiva de quistes por gramo (QPG).
|
Muestras |
Cámara 1 (n.º quistes) |
Cámara 2 (n.º quistes) |
QPG = (C1 + C2) × 50 |
|
Nº 1 |
1 |
2 |
150 |
|
Nº 2 |
0 |
3 |
150 |
|
Nº 3 |
2 |
1 |
150 |
|
Nº 4 |
4 |
5 |
450 |
DISCUSIÓN
La
presencia de quistes confirma la circulación del parásito en la zona de
estudio, incluso en un escenario de baja prevalencia global. Es relevante
señalar que la Giardiasis canina
suele cursar de forma asintomática o con manifestaciones clínicas leves, lo que
dificulta su detección oportuna por parte de los propietarios. Asimismo, la
excreción intermitente de quistes limita la sensibilidad de los métodos
coproparasitológicos convencionales, haciendo recomendable la realización de
evaluaciones repetidas o el uso de pruebas diagnósticas de mayor sensibilidad
para un diagnóstico más preciso (Thompson y Ash, 2016; Companion
Animal Parasite Council, 2025).
La prevalencia observada
en este estudio se enmarca dentro de los valores bajos típicos de poblaciones
caninas domiciliadas, tal como lo describen las guías del Companion
Animal Parasite Council, que señalan que Giardia
spp. mantiene prevalencias moderadas o bajas en
perros con acceso a atención básica y menor densidad poblacional (CAPC, 2025).
Estos resultados también estuvieron se encuentran por debajo de los reportados
en poblaciones de albergues o criaderos, donde la mayor concentración de
animales y la exposición ambiental favorecen tasas de infección superiores al
40 %, como documentan Kurnosova et al. (2024)
en estudios recientes realizados en refugios europeos.
En el contexto
ecuatoriano, los valores obtenidos son comparables con estudios efectuados en
zonas rurales de la región andina, como en la provincia de Chimborazo, donde se
ha reportado la presencia de Giardia spp. en caninos con prevalencias bajas a moderadas
dentro de comunidades rurales evaluadas mediante técnicas coproparasitológicas
múltiples (González-Ramírez et al., 2021). De forma contrastante, en la
región Costa, un estudio realizado en comunidades urbano‑marginales y
rurales de la provincia del Guayas reportó una frecuencia aún menor de Giardia spp. en perros domésticos (0,4 %), pese a registrarse una
elevada carga global de enteroparasitismo, lo que
evidencia heterogeneidad regional en la epidemiología del parásito dentro del
país (Coello-Peralta et al., 2025).
En términos diagnósticos,
la flotación centrífuga con ZnSO₄ utilizada en
este estudio ofrece una sensibilidad adecuada como técnica primaria de cribado;
sin embargo, la excreción intermitente de quistes y la variabilidad en la carga
parasitaria limitan la capacidad de detección cuando se analiza una única
muestra fecal. En este sentido, estudios comparativos han demostrado que la
combinación de métodos, particularmente la inmunofluorescencia directa (DFA) y
la PCR, incrementa significativamente la sensibilidad diagnóstica, siendo DFA
considerada el estándar de oro para la detección de Giardia
duodenalis en muestras fecales de perros y gatos
debido a su alta especificidad y rendimiento superior frente a técnicas de
flotación convencionales (Barrera et al., 2024; European
Scientific Counsel Companion Animal Parasites, 2024).
De manera concordante, Leutenegger et al. (2023) evidencian que paneles qPCR de amplio espectro detectan infecciones incluso cuando
la carga de quistes es baja o intermitente, lo que refuerza la recomendación de
integrar técnicas moleculares en escenarios de vigilancia epidemiológica o
confirmación diagnóstica avanzada, especialmente en estudios de prevalencia
baja como el presente.
La cuantificación
mediante la técnica de McMaster permitió estimar los
niveles de excreción de quistes por gramo de heces (QPG), lo que constituye una
aproximación válida para estudios epidemiológicos operativos y para la
descripción de la intensidad de eliminación parasitaria. No obstante,
tecnologías más recientes como Mini‑FLOTAC han demostrado límites de
detección más bajos y una reproducibilidad superior en la recuperación de
quistes y ooquistes, lo que sugiere que futuras investigaciones podrían beneficiarse
de su implementación para mejorar la precisión diagnóstica, tal como proponen
Colombo et al. (2022) en el diagnóstico cuantitativo de protozoarios
intestinales.
Respecto al potencial
zoonótico, la evidencia indica que la transmisión del perro al humano es
infrecuente y depende del ensamblaje genético implicado. Los ensamblajes C y D,
predominantes en perros, presentan baja probabilidad zoonótica, mientras que
los ensamblajes A y B, de mayor relevancia para la salud humana, se detectan de
forma esporádica y en contextos específicos. Estudios internacionales recientes
realizados en poblaciones caninas de Asia y Europa coinciden en que la
caracterización molecular es esencial para determinar el riesgo real y la
circulación de variantes zoonóticas (Hsu et al.,
2023; Jańczak et al., 2025).
En Ecuador, aunque la
evidencia canina con tipificación molecular aún es limitada, se ha documentado
la circulación de ensamblajes zoonóticos A y B en poblaciones humanas mediante
PCR‑RFLP (Atherton et al., 2013) y en
escenarios semi‑rurales con convivencia
estrecha humano‑animal (Sarzosa et al.,
2018), lo que resalta la pertinencia de incorporar la genotipificación de G.
duodenalis en perros en futuros estudios
nacionales. En este contexto, la integración de un enfoque One
Health permitiría evaluar de manera más precisa la
dinámica de transmisión y el verdadero impacto de la giardiosis
canina en la salud pública animal y humana.
El diseño transversal del
estudio permitió estimar la prevalencia y explorar asociaciones, pero no
establecer relaciones causales. Asimismo, el análisis de una única muestra
fecal por animal podría subestimar la frecuencia real de infección debido a la
eliminación intermitente de quistes de Giardia
duodenalis. El uso de técnicas
coproparasitoscópicas convencionales, aunque apropiadas para estudios
epidemiológicos de campo, presentó una menor sensibilidad frente a métodos como
la inmunofluorescencia directa o las técnicas moleculares. Finalmente, la
ausencia de caracterización molecular limita la evaluación del potencial
zoonótico de los aislados positivos.
CONCLUSIÓN
La
prevalencia de Giardia duodenalis
en perros domiciliados de Quisapincha fue baja
(3,28 %), con intensidad moderada.
No se
detectaron asociaciones estadísticamente significativas entre la prevalencia de
Giardia duodenalis y
edad, sexo y control parasitario.
RECOMENDACIONES
Combinar el
método de flotación con DFA/ELISA y, cuando sea posible, PCR con tipificación
de ensamblajes.
AGRADECIMIENTOS
Se empleó una herramienta
de asistencia de redacción basada en IA (Microsoft Copilot)
para mejorar la claridad lingüística del manuscrito. La verificación de datos,
interpretación de resultados y revisión crítica fueron realizadas íntegramente
por los autores.”
REFERENCIAS
Adell-Aledón,
M., Köster, P. C., de Lucio, A., Puente, P.,
Hernández-de-Mingo, M., Sánchez-Thevenet, P., &
Carmena, D. (2018). Occurrence and molecular epidemiology of Giardia
duodenalis infection in
dog populations in eastern Spain. BMC Veterinary Research, 14, 26. https://doi.org/10.1186/s12917-018-1353-z
Agresti, A., Berrilli,
F., Maestrini, M., Guadano Procesi, I., Loretti, E., Vonci,
N., & Perrucci, S. (2022). Prevalence,
risk factors and genotypes of Giardia duodenalis in sheltered dogs in Tuscany (Central Italy). Pathogens, 11(1),
12. https://doi.org/10.3390/pathogens11010012
Atherton, R., Bhavnani, D., Calvopiña, M., Vicuña, Y., Cevallos, W.,
& Eisenberg, J. N. S. (2013). Molecular identification of Giardia
duodenalis in Ecuador by
polymerase chain reaction–restriction fragment length polymorphism. Memórias
do Instituto Oswaldo Cruz, 108(4), 512–515. https://doi.org/10.1590/S0074-02762013000400019
Barbosa, A. D., Egan, S., Feng, Y.,
Xiao, L., & Ryan, U. (2023). Cryptosporidium
and Giardia in cats
and dogs: What is the real zoonotic risk? Parasitology Research.
https://doi.org/10.1016/j.crpvbd.2023.100158
Barrera, J.
P., Miró, G., Carmena, D., Foncubierta, C., Sarquis, J., Marino, V., Estévez‑Sánchez, E., Bailo,
B., Checa, R., & Montoya, A. (2024). Enhancing diagnostic accuracy: Direct immunofluorescence assay as the gold standard for detecting Giardia
duodenalis and Cryptosporidium
spp. in canine and feline fecal samples.
BMC Veterinary Research,
20(1), Article 445. https://doi.org/10.1186/s12917-024-04297-0
Bertout,
J. A., Baneux, P. J. R., & Robertson-Plouch, C. K. (2021). Recommendations
for ethical review of veterinary clinical trials. Frontiers in Veterinary
Science, 8, 715926. https://doi.org/10.3389/fvets.2021.715926
Boucard, A.-S., Thomas, M., Lebon, W., Polack, B., Florent, I., Langella, P., &
Bermúdez-Humarán, L. G. (2021). Age and Giardia intestinalis infection impact canine gut microbiota. Microorganisms,
9(9), 1862. https://doi.org/10.3390/microorganisms9091862
Cai, W., Ryan, U., Xiao, L.,
& Feng, Y. (2021). Zoonotic Giardiasis: an update.
Parasitology Research,
120, 4199–4218. https://doi.org/10.1007/s00436-021-07325-2
Chiebao, D. P., Martins,
C. M., Pena, H. F. J., Gabriel, F. H. L., Turazza,
J., Soares, H., & Merlo, A. (2020). Epidemiological
study of Giardia duodenalis infection in companion dogs from Brazil. Zoonoses
and Public Health, 67(7),
765–773. https://doi.org/10.1111/zph.12710
Clopper, C. J., & Pearson, E. S.
(1934). The use of confidence
or fiducial limits illustrated in the case of the binomial. Biometrika, 26(4), 404–413.https://doi.org/10.1093/biomet/26.4.404
Coello-Peralta, R., Vinueza, R. L.,
Pazmiño Gómez, B. J., León, R., Faytong-Haro, M., Yancha Moreta, C., Guerrero Lapo, G. E., González González, M., Andrada, A. R., Alderete, M., Cedeño-Reyes,
P., Salazar Mazamba, M. L., Gómez Landires,
E. A., & Ramallo, G. (2025). Ecoepidemiology and zoonotic risk of intestinal
parasites in humans and domestic
dogs in marginalized coastal communities of Ecuador. Scientific Reports, 15,
30329. https://doi.org/10.1038/s41598-025-13886-4
Colombo, M., Morelli, S., Damiani,
D., Del Negro, M. A., Milillo, P., Simonato, G., Barlaam, A., &
Di Cesare, A. (2022). Comparison of different copromicroscopic techniques in the diagnosis of
intestinal and respiratory parasites of naturally infected dogs and cats. Animals, 12(19), 2584. https://doi.org/10.3390/ani12192584
Companion
Animal Parasite Council. (2025). Giardia: CAPC parasite guidelines. https://capcvet.org/guidelines/Giardia/
Díaz, L., Zambrano, E., Flores, M.
E., Contreras, M., Crispín, J. C., & Bobadilla, N. A. (2021). Ethical considerations in animal research: The principle
of the three Rs. Revista de Investigación Clínica, 73(4),
199–208. https://doi.org/10.24875/ric.20000380
European Scientific Counsel Companion Animal Parasites. (2024). Guidelines
for control of intestinal protozoa
in dogs and cats. https://www.esccap.org/guidelines/
Faust, E. C., D’Antoni,
J. S., Odom, V., Miller, M. J., Peres, C., Sawitz, W., Thomen, L. F., Tobie, J. E., & Walker, J. H. (1938). A critical study of clinical laboratory techniques for the diagnosis of protozoan cysts and helminth eggs in feces. The American Journal of
Tropical Medicine and Hygiene, 18(2), 169–183. https://doi.org/10.4269/ajtmh.1938.s1-18.169
González-Ramírez, L. C., Vázquez, C.
J., Chimbaina, M. B., Djabayan-Djibeyan,
P., Prato-Moreno, J. G., Trelis, M., & Fuentes,
M. V. (2021). Ocurrence of enteroparasites
with zoonotic potential in animals of the rural area of San Andres, Chimborazo, Ecuador. Veterinary
Parasitology: Regional Studies
and Reports, 26, 100630. https://doi.org/10.1016/j.vprsr.2021.100630
Hsu, C.-H., Liang,
C., Chi, S.-C., Lee, K.-J., Chou, C.-H., Lin, C.-S., & Yang, W.-Y. (2023). An epidemiological assessment of Cryptosporidium and
Giardia spp. infection in pet animals from
Taiwan. Animals,
13(21), 3373. https://doi.org/10.3390/ani13213373
Jańczak, D., Olszewski,
J., Maj, A. K., Górecki,
P., Nowak, M., & Szaluś‑Jordanow,
O. (2025). Prevalence of Giardia
duodenalis genetic assemblages isolated from dogs and cats
in Poland. Journal
of Veterinary Research, 69(3),
447–455. https://doi.org/10.2478/jvetres-2025-0043
Kurnosova, O. P., Panova,
O. A., & Arisov, M. V. (2024). Prevalence of Giardia duodenalis in dogs and cats: Age‑related predisposition, symptomatic, and asymptomatic cyst shedding. Veterinary World, 17(2), 379–383. https://doi.org/10.14202/vetworld.2024.379-383
Lappin, M. R. (2011). Diagnosis and
treatment of Giardia infections in dogs and cats. In Proceedings of the World Small Animal Veterinary Association World Congress. World Small Animal Veterinary Association. https://www.vin.com/apputil/content/defaultadv1.aspx?id=5124212&pid=11343
Leutenegger, C. M., Lozoya, C. E., Tereski, J., Andrews, J., Mitchell, K. D., Meeks, C., Willcox, J. L., Freeman, G., Richmond, H. L., Savard, C., & Evason, M. D.
(2023). Comparative study of a broad
qPCR panel and centrifugal flotation for detection
of gastrointestinal parasites in fecal samples from dogs and cats
in the United States. Parasites & Vectors,
16, 288. https://doi.org/10.1186/s13071-023-05904-z
Robertson, L. J. (2023). Giardiasis in animals.
In Merck Veterinary Manual. Merck & Co. https://www.merckvetmanual.com/digestive-system/Giardiasis-Giardia/Giardiasis-in-animals
Sarzosa, M., Graham, J. P., Salinas,
L., & Trueba, G. (2018). Potential zoonotic transmission of Giardia duodenalis
in semi‑rural communities
near Quito, Ecuador. International Journal of Applied Research in Veterinary Medicine,
16(1), 1–6. https://escholarship.org/uc/item/0ch002dz
Smith, R. C., & Starkey, L. A.
(2023). Update on Giardiasis: Diagnostics,
treatment, and management. Today’s Veterinary Practice. https://todaysveterinarypractice.com/wp-content/uploads/sites/4/2023/10/TVP-2023-1112_Giardiasis.pdf
Souza‑Dantas, L. M., Bastos, O.
P. M., Brener, B., Salomão,
M., Guerrero, J., & Labarthe, N. V. (2007). Técnica de centrífugo‑flutuação com sulfato de zinco no diagnóstico de helmintos gastrintestinais
de gatos domésticos. Ciência Rural, 37(3).
https://doi.org/10.1590/S0103-84782007000300051
Thompson, R. C. A., & Ash, A.
(2016). Molecular epidemiology of Giardia and Cryptosporidium
infections. Infection,
Genetics and Evolution, 40,
315–323. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2015.10.015
Thrusfield,
M., Christley, R., Brown, H., Diggle, P. J., French,
N., Howe, K., Kelly, L., O’Connor, A., Sargeant, J.,
& Wood, H. (2018). Veterinary epidemiology
(4th ed.). Wiley-Blackwell.
https://onlinelibrary.wiley.com/doi/book/10.1002/9781118280249
Topographic‑Map.com. (2026). Mapa topográfico
Quisapincha, altitud y relieve. https://es-ec.topographic-map.com/map-7qzrt6/Quisapincha/
Trueba, G., Sarzosa,
M., Salinas, L., & Graham, J. P. (2016). Potential
zoonotic transmission of Giardia duodenalis
in semi-rural communities near Quito, Ecuador. Journal
of Applied Research in Veterinary Medicine, 14(1), 231–238. https://jarvm.com/articles/Vol16Iss1/Vol16%20Iss1%20Trueba.pdf
Western College
of Veterinary Medicine. (2021). Quantitative
faecal flotation – McMaster egg counting
technique. University
of Saskatchewan. https://wcvm.usask.ca/learnaboutparasites/diagnostics/quantitative-faecal-flotation-mcmaster.php
World
Small Animal Veterinary Association. (2023). WSAVA global guidelines. https://wsava.org/global-guidelines/
Los autores declaran que no existe
conflicto de intereses.